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Viabilidad embrionaria
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Reprogramación
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Endometrial Database
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Universidad de Valencia

EDB is a service of Fundacion IVI, sponsored by University of Valencia (SPAIN)


VIABILIDAD EMBRIONARIA

Investigador Principal: Francisco Domínguez
Otros investigadores: Imma Sánchez
Tecnicos: Alicia Quiñonero




 
Descripción de la investigación

 

El método, prácticamente único, utilizado para seleccionar los embriones más viables y con mayor potencial implantatorio en Fecundacion In Vitro está basado únicamente en parámetros morfológicos. Cuando se combinan de forma correcta todos los criterios conocidos actualmente, el sistema alcanza una fiabilidad aceptable para su aplicación clínica.

 

Sin embargo, un embrión morfológicamente normal no significa que no tenga anomalías cromosómicas, de hecho, se estima que el 70% de los embriones morfológicamente normales poseen aneuploidias (Gutierrez-Mateo et al, 2004).
El diagnóstico genético preimplantacional se ha desarrollado gracias a los avances que se han producido en las técnicas de reproducción asistida y el desarrollo de las técnicas de biología molecular y citogenética ya que son necesarios test altamente eficientes y rápidos que permitan la detección de anomalías genéticas en una o dos células que se obtienen mediante biopsia embrionaria.
Hoy en día se están investigando un conjunto de técnicas, tales como la determinación de los niveles de glucosa, lactato y piruvato, el metabolismo de aminoácidos o la evaluación de los perfiles proteómicos (Katz-jaffe et al. 2005, Domínguez F. et al., 2008). Muy recientemente se ha comenzado a evaluar el metaboloma (Scott R. et al., 2008) utilizando tecnologías de espectrometría de infrarrojos. Sin embargo la obtención de perfiles metabólicos y proteómicos en medio de cultivo de embriones utilizando técnicas de cromatografía líquida- espectrometría de masas (LC/MS) de última generación, no está aun plenamente explorada pudiendo convertirse en un método adecuado para analizar los medios de cultivo donde se desarrollan los embriones para seleccionar marcadores (pequeñas moléculas) que permitan diferenciar embriones normales que implantarán de aquellos con aneuploidias que nunca implantarán.
Esta tecnología es muy novedosa y prácticamente inexplorada en el campo de la reproducción asistida, lo cual abre grandes posibilidades a la búsqueda de marcadores en una muestra no invasiva (medio de cultivo), que podría aplicarse no sólo al estudio de embriones provenientes de parejas con alto riesgo, sino extenderse también a todas aquellas parejas que se someten a FIV, y a donación de ovocitos en las se ha detectado una incidencia anormalmente alta de anomalías cromosómicas (Munné et al, 2006).

Por tanto nuestro objetivo en esta línea de investigación es desarrollar nuevos sistemas diagnósticos no invasivos tanto proteómicos como metabolómicos para la selección de embriones con mas capacidad de implantación y también para la detección de anomalías cromosómicas en embriones procedente de fecundación in vitro analizando los medios condicionados en los cuales están creciendo dichos embriones.

Figura 1.
(A) Espectro representative de un medio de cultivo control (sin embrión) medido a 298ºK (a) espectro completo (d ¼ 0.50–8.50ppm) (b) ampliación de la región aromática (d ¼ 8.50–5.00 ppm) y alifática (d ¼ 0.50–4.25 ppm). Asignacion de picos: : 1, valina; 2, isoleucina; 3, leucina; 4, threonina; 5, lactato; 6, alanina; 7, lisina; 8, arginina; 9, prolina; 10, methionina; 11, ácido glutamico; 12, valina; 13, piruvato; 14, methionina; 15, cistina; 16, lisina; 17, arginina; 18, EDTA; 19, glucosa; 20, lactato; 21, treonina; 22, glucosa; 23, tirosina; 24, histidina; 25, fenilalanina; 26, triptofano. (B) Comparación de la región compatible con Isoleucina entre espectros procedentes de medios de cultivo con presencia de embriones normales (rojo), trisomicos 21 (azul) y monosomicos 21 (verde). Las diferencias entre muestras en la intensidad de señal se observaron en la región marcada.

 

Papers
  • Dominguez F, Castello D, Remohí J, Simón C, Cobo A.

    Effect of vitrification on human oocytes: a metabolic profiling study. Fertil Steril. 2013 Feb;99(2):565-72

  • Sánchez-Ribas I, Riqueros M, Vime P, Puchades-Carrasco L, Jönsson T, Pineda-Lucena A, Ballesteros A, Domínguez F, Simón.

    Differential metabolic profiling of non-pure trisomy 21 human preimplantation embryos. 2012 Nov;98(5):1157-64.

  • Dominguez F, Gadea B, Mercader A, Esteban FJ, Pellicer A, Simón C.

Embryologic outcome and secretome profile of implanted blastocysts obtained after coculture in human endometrial epithelial cells versus the sequential system. Fertil Steril. 2010 Feb;93(3):774-782

  • Domínguez F, Gadea B, Esteban FJ, Horcajadas JA, Pellicer A, Simón C.

Comparative protein-profile analysis of implanted versus non-implanted human blastocysts. Hum Reprod. 2008 Sep;23(9):1993-2000.